Walking on the ureide pathway

Abstract

Le ureidi, allantoina e allantoato, sono delle molecole ricche di azoto che derivano dal catabolismo delle purine. Alcuni organismi come uccelli, insetti e molti primati tra cui l’uomo eliminano l’eccesso di azoto sotto forma di acido urico, mentre per altri organismi il recupero degli atomi di azoto contenuti nelle purine può essere di vitale importanza. In questi organismi l’acido urico è convertito in ammonio e gliossilato passando attraverso gli intermedi allantoina e allantoato, permettendo il completo recupero dei quattro atomi di azoto contenuti nelle basi puriniche. Questo lavoro ha avuto lo scopo di studiare le basi molecolari del recupero dell’azoto lungo la via metabolica delle ureidi in A.thaliana. Lo stato dell’arte riguardo a questo argomento è descritto nel capitolo uno. Nel capitolo due è riportato lo studio che riguarda il gene coinvolto nella biosintesi della S-allantoina. Questo gene (TTL) catalizza i due passaggi enzimatici che portano alla formazione di allantoina stereoselettiva a partire da idrossiisourato( HIU): idrolisi dell’HIU, attraverso un dominio C-terminale (Urah), e decabossilazione del prodotto, 2-osso-4-hydrossi-4-carbossi-5-ureidoimidazolina (OHCU), attraverso un dominio N-terminale (Urad). In altri organismi diversi dalle piante, questi domini sono presenti come singoli polipeptidi codificati da geni diversi. Oltre alla peculiarità di essere un gene con un prodotto bifunzionale, quello di Arabidopsis produce un trascritto che va incontro a splicing alternativo che dà origine due isoforme di RNA. Le proteine generate dalla traduzione di queste isoforme hanno attività simile in vitro, ma si localizzano in compartimenti cellulari diversi in vivo. TTL1- viene importata nel perossisoma, mentre TTL2- resta nel citosol. I trascritti che derivano dallo splicing alternativo sono presenti in quantità simili nei vari tessuti di Arabidopsis, con l’eccezione dei boccioli dove l’isoforma più corta è circa cinque volte maggiore rispetto a quella più lunga. L’analisi delle EST di diverse piante indica che lo splicing alternativo, sebbene non presente in tutte le piante, è conservato nelle monocotiledoni e dicotiledoni. L’enzima perossisomiale deve essere quello adibito alla conversione di HIU in allantoina ed è stato ribattezzato S- allantoina sintasi, poiché l’HIU è un substrato instabile prodotto dall’urato ossidasi nel perossisoma. La proteina citoplasmatica, sebbene sia in grado di formare allantoina, potrebbe essere implicata nella regolazione della crescita della pianta come interattore della porzione chinasica del recettore di membrana dei brassinosteroidi come riportato in studi precedenti (Nam et Lee, 2004). Nel capitolo tre è riportata la caratterizzazione di un gene a funzione ignota, identificato come S-ureidoglicina idrolasi.l’ureidoglicina viene prodotta lungo il pathway delle ureidi dall’enzima Mn-dipendente allantoato amido idrolasi. Questa molecola subisce degradazione spontanea ad urea e gliossilato in vitro, ma viene trasformata in S-ureidoglicolato in vivo. L’enzima S-ureidoglicina amidoidrolasi catalizza l’idrolisi manganese-dipendente dell’ureidoglicina formando ureidoglicolato e ammonio. In Arabidopsis questo enzima si trova, così come l’allantoato amido idrolasi nel reticolo endoplasmatico. Nel capitolo quattro sono descritti il clonaggio, la sovra-espressione e la purificazione del gene di Arabidopsis omologo all’ureidoglicolato idrolasi di E. coli. I saggi di attività su questa putativa ureidoglicolato idrolasi hanno dimostrato che questa proteina sebbene omologa a quella a funzione nota di batterio, non è capace di idrolizzare l’ureidoglicolato. In una recente pubblicazione (Werner et al., novembre 2009) è stata identificata l’ureidoglicolato idrolasi di Arabidopsis, in una proteina omologa all’allantoato amido idrolasi di pianta piuttosto che all’ureidoglicolato idrolasi batterica.

Ureide, allantoin and allantoate, are nitrogen-rich compounds derived from purine catabolism. While birds, insects and most primates including humans, eliminate uric acid to get rid of excess nitrogen, for many others organisms the recovery of the purine ring nitrogen is vital. In this organisms uric acid is converted into ammonia and glyoxylate via allantoin and allantoate allowing the rescue of nitrogen atoms. The aim of this study was to investigate on chemical basis of nitrogen recovery through the ureide pathway in A. thaliana. The state of the art in the ureide metabolism is described in chapter one. In chapter two is described the gene involved in S-allantoin biosynthesis. This gene (TTL) catalyzes two enzymatic reaction leading to the steroselective formation of S-allantoin: hydrolysis of hydroxyisourate (HIU) through a C-terminal Urah domain and decarboxylation of OHCU through a N-terminal Urad domain. In other organisms but plants and few some organisms these domains are present in two different gene units. Besides this peculiarity this gene produce two isoforms of mRNA by differential splicing. The two proteins generated have similar catalytic activity in vitro but different in vivo localisation: TTL1- localizes in peroxisomes whereas TTL2- localizes in the cytosol. Transcripts deriving from the two splice variants are present in a similar proportion in various Arabidopsis tissues but in floral buds, where TTL2- is prevalent. Analysis of TTL transcripts in various plants indicate that similar splice variants are present in monocots and dicots. The peroxisomal enzyme must be the S-allantoin synthase because HIU is an unstable substrate that should be only produced in these organelles trough the oxidation of urate by urate oxidase. The cytoplasmic enzyme could be the one that interact with the kinasic domain of brassinosteroid receptor as reported in another study. In chapter three is reported the identification and the characterization of a gene of unknown function to be a S-ureidoglycine hydrolase. Ureidoglycine is produced by allantoate amidohydrolase, a manganese-dependent enzyme found in plants and bacteria. Ureidoglycine spontaneously decays into urea and glyoxylate in vitro, while living cells produce S-ureidoglycolate. S-ureidoglycine amidohydrolase catalyze the Mn-dependent release of ammonia through hydrolysis of S-ureidoglycine yields S-ureidoglycolate. This enzyme in plants is localized, like allantoate amidohydrolase, in the endoplasmic reticulum. In chapter four, is described the cloning, over-expression and purification of the Arabidopsis homologous of E. coli ureidoglycolate hydrolase gene. Activity assay on this protein demonstrated that even if the protein are homologues the putative Arabidopsis ureidoglycolate hydrolase has not that function. In a recent publication (Werner et al, November 2009) the ureidoglycolate hydrolase function was associated with another Arabidopsis protein.